一次合格的 MAT 法熱原檢測(cè)，需同時(shí)滿足 “合格標(biāo)曲” 與 “合格樣品檢測(cè)值及回收率” 兩大關(guān)鍵條件。合格標(biāo)曲需具備四要素：一是良好線性，采用 4-Parameter Logistic 擬合，R2 需接近 1.0，避免線性不佳導(dǎo)致定量偏差；二是良好信號(hào)值，各濃度點(diǎn) OD 值需呈梯度變化，高濃度點(diǎn) OD 值需足夠（如上限濃度 OD600 達(dá) 1.0 左右），信號(hào)過(guò)低會(huì)影響靈敏度；三是良好 CV，復(fù)孔間 CV 需控制在合理范圍（定量限內(nèi)≤25%、定量上下限≤30%），確保重復(fù)性；四是良好背景值，陰性對(duì)照 OD 值需低于標(biāo)曲下限濃度點(diǎn) 10%，排除外源污染。合格樣品檢測(cè)值則需滿足加標(biāo)回收率在 50%-200%，例如文檔中某樣品 10 倍稀釋回收率 41.3%（不合格），20 倍 71.3%（接近合格），40 倍 97.7%（合格），需在 MVD 范圍內(nèi)調(diào)整稀釋倍數(shù)，同時(shí)樣品熱原濃度需低于規(guī)定限值（CLC），方可判定樣品符合要求。

MAT法熱原檢測(cè)中，非內(nèi)毒素?zé)嵩∟EP）對(duì)照品設(shè)為 “選做”，且試劑盒不默認(rèn)配備，需結(jié)合檢測(cè)需求靈活使用，背后有明確的設(shè)置邏輯。首先，試劑盒開(kāi)發(fā)階段已通過(guò)驗(yàn)證（用多種 NEP 配體刺激細(xì)胞），證明其可檢出 NEP，后期實(shí)驗(yàn)是否加入 NEP 對(duì)照，只需根據(jù)內(nèi)部管理要求或專業(yè)人員建議確定，無(wú)需強(qiáng)制設(shè)置；若產(chǎn)品產(chǎn)線明確無(wú) NEP 污染風(fēng)險(xiǎn)（如只使用革蘭氏陰性菌原料），可刪除 NEP 對(duì)照，簡(jiǎn)化操作。其次，試劑盒不配備 NEP 對(duì)照品，是因不同用戶需求差異大 —— 部分用戶需檢測(cè)特定 NEP（如脂磷壁酸），部分需檢測(cè)廣譜 NEP，因此提供單獨(dú)購(gòu)買(mǎi)選項(xiàng)，用戶可按需選擇，避免資源浪費(fèi)。NEP 對(duì)照品的主要使用場(chǎng)景包括：一是方法驗(yàn)證階段，用于確認(rèn)試劑盒對(duì) NEP 的響應(yīng)性；二是產(chǎn)品工藝變更后，排查是否引入 NEP 污染；三是歐盟申報(bào)時(shí)，需證明方法可覆蓋 NEP，此時(shí)需加入 NEP 對(duì)照品并顯示陽(yáng)性結(jié)果。若樣品檢測(cè)中 NEP 對(duì)照品陽(yáng)性，而樣品檢測(cè)陰性，可排除 NEP 污染；若樣品陽(yáng)性，則需進(jìn)一步鑒定熱原類(lèi)型。

在 MAT 熱原檢測(cè)中，單核細(xì)胞系與 PBMC（外周血單個(gè)核細(xì)胞）的檢測(cè)結(jié)果穩(wěn)定性差異明顯。實(shí)驗(yàn)結(jié)果數(shù)據(jù)顯示，單核細(xì)胞系的標(biāo)曲 R2 達(dá) 1.000，各濃度點(diǎn) CV 值極低（如 ST1 為 0.92%、ST2 為 1.5%），相對(duì)偏差均在 5% 以內(nèi)；而 PBMC 的標(biāo)曲 R2 為 0.997，部分濃度點(diǎn) CV 值超 20%（如 ST2 為 39.6%、ST6 為 45.5%），相對(duì)偏差高達(dá) 171.43%。這種差異源于兩者對(duì)熱原反應(yīng)的一致性—單核細(xì)胞系能穩(wěn)定釋放 IL-6，PBMC 則因供體差異導(dǎo)致 IL-6 釋放水平波動(dòng)，直接影響熱原檢測(cè)結(jié)果的重復(fù)性，單核細(xì)胞系更適配準(zhǔn)確的熱原定量需求。

歐盟在熱原檢測(cè)方法選擇上，以動(dòng)物保護(hù)和檢測(cè)準(zhǔn)確性為導(dǎo)向，形成明確的法規(guī)傾向。首先，歐盟禁止家兔法（PRT 法）這類(lèi)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)，要求采用替代方法，單核細(xì)胞活化試驗(yàn)（MAT 法）因符合 3R 原則（替代、減少、優(yōu)化），被納入歐洲藥典（EP2.6.30），成為熱原檢測(cè)的主流替代方法。其次，對(duì)于鱟試劑法，歐盟雖未禁止（因其屬于鱟血提取而非動(dòng)物實(shí)驗(yàn)），但出于鱟資源保護(hù)考量，推薦使用重組 C 因子法（EP2.6.32），該方法無(wú)需依賴鱟血，通過(guò)基因工程技術(shù)制備試劑，避免資源衰減與生態(tài)爭(zhēng)議。此外，美國(guó)藥典（USP）和日本藥典（JP）也同步推薦重組試劑（含重組級(jí)聯(lián)試劑 rCR），形成國(guó)際法規(guī)協(xié)同趨勢(shì)。需注意的是，歐盟對(duì)熱原檢測(cè)的要求是 “重點(diǎn)全場(chǎng)景覆蓋致熱物質(zhì)”，MAT 法因能同時(shí)檢測(cè)內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩亟M C 因子法因特異性高（無(wú) G 因子干擾），均符合其法規(guī)邏輯，而傳統(tǒng)鱟試劑法需額外關(guān)注 β- 葡聚糖假陽(yáng)性問(wèn)題，復(fù)雜基質(zhì)樣品需加做干擾驗(yàn)證。

PBMC（外周血單個(gè)核細(xì)胞）的供體差異會(huì)直接導(dǎo)致熱原檢測(cè)結(jié)果的波動(dòng)，主要體現(xiàn)在 IL-6 釋放水平的不一致。不同供體的 PBMC，其單核細(xì)胞比例、TLR 受體表達(dá)量、免疫活性狀態(tài)存在差異：有的供體 PBMC 受熱原刺激后， IL-6 釋放量高；有的則極低，甚至無(wú)明顯響應(yīng)。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)顯示， PBMC 的標(biāo)曲各濃度點(diǎn)相對(duì)偏差有高達(dá) 171.43%的，正是這種差異的體現(xiàn)，導(dǎo)致熱原檢測(cè)結(jié)果難以標(biāo)準(zhǔn)化，無(wú)法準(zhǔn)確判斷供試品熱原是否超標(biāo)，從而增加了藥品的質(zhì)量控制風(fēng)險(xiǎn)。

MAT 法熱原檢測(cè)的關(guān)鍵機(jī)制是 “熱原活化單核細(xì)胞 TLR 受體，觸發(fā)炎癥因子分泌”，TLR 受體的全覆蓋是保障檢測(cè)無(wú)遺漏的關(guān)鍵。不同熱原需活化不同 TLR 受體：最常見(jiàn)的內(nèi)毒素（LPS）主要活化 TLR4，而革蘭氏陽(yáng)性菌的非內(nèi)毒素?zé)嵩ㄈ缰妆谒幔┬杌罨?TLR2/6，真菌多糖活化?TLR2/4，病毒核酸活化 TLR3/7/8 等。因此，MAT 試劑盒配套細(xì)胞需具備全覆蓋的 TLR 受體表達(dá)—湖州申科生物通過(guò) Western blot 驗(yàn)證，其 HL-60 細(xì)胞系表達(dá) TLR1-TLR9，可響應(yīng)各類(lèi)熱原。為進(jìn)一步驗(yàn)證覆蓋能力，申科用不同非內(nèi)毒素?zé)嵩潴w（如脂磷壁酸、酵母多糖）刺激細(xì)胞，結(jié)果顯示所有配體均能誘導(dǎo) IL-6 分泌，且呈良好量效關(guān)系，證明試劑盒可檢出各類(lèi)熱原。若細(xì)胞 TLR 受體覆蓋不全（如缺失 TLR2），則無(wú)法檢測(cè)革蘭氏陽(yáng)性菌的非內(nèi)毒素?zé)嵩?，?dǎo)致漏檢風(fēng)險(xiǎn)，因此 TLR 受體的全覆蓋是 MAT 法熱原檢測(cè)的關(guān)鍵技術(shù)指標(biāo)之一。